Заключение
В результате проведенных исследований было выявлено влияние сахарозы, фитогормонов и фотопериода на формирование микроклубней картофеля (Solanum tuberosum L.) сорта Невский в асептической культуре in vitro. Форма микроклубней сорта Невский, полученных на искусственной питательной среде в асептических условиях, не зависела ни от фотопериода, ни от состава питательной среды. Добавление кинетина в питательную среду с высокой концентрацией сахарозы в особенности при инкубации в условиях КД вызывало образование недифференцированных тканей в области глазков и израстание микроклубней, в результате чего увеличивалось количество клубней с дефектами. На питательных средах, содержащих БАП, формировались сильно редуцированные побеги, на которых в основном образовывались сидячие клубни, что, в свою очередь, приводило к снижению количества клубней на растение.
Фракционный состав и выход микроклубней более 5 мм зависел от состава питательной среды и фотопериода. Максимальный эффект фотопериода проявился на безгормональной питательной среде (Сах80) с увеличением выхода крупных микроклубней с 20% до 56% при КД. Добавление в питательную среду регуляторов роста способствовало снижению влияния фотопериода. При НТ увеличение количества клубней размером более 5 мм способствовало добавление в питательную среду кинетина (Кин1-Сах80, Кин2.5-Сах80) и БАП (БАП5- Сах80) по сравнению с безгормональной питательной средой Сах80.
Благодарности. Работа выполнена в рамках государственного задания: Мобилизация генетических ресурсов растений и животных, создание новаций, обеспечивающих производство биологически ценных продуктов питания с максимальной безопасностью для здоровья человека и окружающей среды (номер регистрации АААА-А18-118031390148-1).
Растения картофеля предоставлены ЦКП «Биоресурсная коллекция картофеля» (регистрационный номер 471948, www.ckp-rf.ru).
Литература
Международный год картофеля. Мир картофеля. - URL: http://www.fao.org/potato- 2008/ru/world/europe.html.
AltafS.A., Sughra M.G., Suhail R.A., Muhammad M.S., Umar D.M. The effect of sugar and different growth regulators on the tuberization of potato (Solanum tuberosum L. cv. Desiree) // Sindh Univ. Res. J., Sci. Ser. - 2013. - V. 45, No 2. - P. 429-432.
Veramendi J., Willmitzer L., Trethewey R.N. In vitro grown potato microtubers are a suitable system for the study of primary carbohydrate metabolism // Plant Phys. Biochem. - 1999. - V. 37, No 9. - P. 693-697. - doi: 10.1016/S0981-9428(00)80100-X.
Zobayed S.M.A., Armstrong J., Armstrong W. Micropropagation of potato: Evaluation of closed, diffusive, and forced ventilation on growth and tuberization // Ann. Bot. - 2001. - V. 87, No 1. - P. 53-59. - doi: 10.1006/anbo.2000.1299.
Dobranszki J., Magyar-Tabori K., HudakI. In vitro tuberization in hormone-free systems on solidified medium and dormancy of potato microtubers // Fruit, Veg. Cereal Sci. Bio- technol. - 2008. - V. 2, No 1. - P. 82-94.
Hossain M.J. In vitro microtuberisation in potato obtained from diverse sources // Plant Tissue Cult. Biotechnol. - 2005. - V. 15, No 2. - P. 157-166.
Ebadi M., Iranbakhsh A. The induction and growth of potato (Solanum tuberosum. L) microtubers (sante cultivar) in response to the different concentrations of 6-benzylaminopurine and sucrose // Afr. J. Biotechnol. - 2011. - V. 10, No 52. - P. 10626-10635. - doi: 10.5897/AJB11.047.
Аксенова Н.П., Сергеева Л.И., Константинова Т.Н., Голяновская С.А., Колачев- ская О.О., Романов Г.А. Регуляция покоя и прорастания клубней картофеля // Физиология растений. - 2013. - Т. 60, № 3. - С. 307-319.
Garner N., Blake J. The induction and development of potato microtubers in vitro on media free of growth regulating substances // Ann. Bot. - 1989. - V. 63, No 6. - P. 663-674. - doi: 10.1093/oxfordjournals.aob.a087795.
Aslam A., Iqbal J. Combined effect of cytokinin and sucrose on in vitro tuberization parameters of two cultivars i.e., Diamant and Red Norland of potato (Solanum tuberosum) // Pak. J. Bot. - 2010. - V. 42, No 2. - P. 1093-1102.
Vinterhalter D., Dragicevic I., Vinterhalter B. Potato in vitro culture techniques and biotechnology // J. Plant. Res. - 2016. - V. 129, No 4. - P. 759-770.
Nistor A., Campeanu G., Atanasiu N., Chiru N., Karacsonyi1 D. Influence of potato genotypes on “in vitro” production of microtubers // Rom. Biotechnol. Lett. - 2010. - V. 15, No 3. - P. 5317-5324.
References
International year of the potato. Potato world. Available at: http://www.fao.org/potato- 2008/ru/world/europe.html. (In Russian)
Altaf S.A., Sughra M.G., Suhail R.A., Muhammad M.S., Umar D.M. The effect of sugar and different growth regulators on the tuberization of potato (Solanum tuberosum L. cv. Desiree). Sindh Univ. Res. J., Sci. Ser., 2013, vol. 45, no. 2, pp. 429-432.
Veramendi J., Willmitzer L., Trethewey R.N. In vitro grown potato microtubers are a suitable system for the study of primary carbohydrate metabolism. PlantPhys. Biochem., 1999, vol. 37, no. 9, pp. 693-697. doi: 10.1016/S0981-9428(00)80100-X.
Zobayed S.M.A., Armstrong J., Armstrong W. Micropropagation of potato: Evaluation of closed, diffusive, and forced ventilation on growth and tuberization. Ann. Bot., 2001, vol. 87, no. 1, pp. 53-59. doi: 10.1006/anbo.2000.1299.
Dobranszki J., Magyar-Tabori K., Hudak I. In vitro tuberization in hormone-free systems on solidified medium and dormancy of potato microtubers. Fruit, Veg. Cereal Sci. Biotechnol., 2008, vol. 2, no. 1, pp. 82-94.
Hossain M.J. In vitro microtuberisation in potato obtained from diverse sources. Plant Tissue Cult. Biotechnol., 2005, vol. 15, no. 2, pp. 157-166.
Ebadi M., Iranbakhsh A. The induction and growth of potato (Solanum tuberosum. L) microtubers (sante cultivar) in response to the different concentrations of 6-benzylaminopurine and sucrose. Afr. J. Biotechnol., 2011, vol. 10, no. 52, pp. 10626-10635. doi: 10.5897/AJB11.047.
Aksenova N.P., Sergeeva L.I., Konstantinova T.N., Golyanovskaya S.A., Kolachevskaya O.O., Romanov G.A. Regulation of potato tuber dormancy and sprouting. Russ. J. Plant Physiol., 2013, vol. 60, no. 3, pp. 301-312. doi: 10.1134/S1021443713030023.
Garner N., Blake J. The induction and development of potato microtubers in vitro on media free of growth regulating substances. Ann. Bot., 1989, vol. 63, no. 6, pp. 663-674. doi: 10.1093/oxfordjournals.aob.a087795.
Aslam A., Iqbal J. Combined effect of cytokinin and sucrose on in vitro tuberization parameters of two cultivars i.e., Diamant and Red Norland of potato (Solanum tuberosum). Pak. J. Bot., 2010, vol. 42, no. 2, pp. 1093-1102.
Vinterhalter D., Dragicevic I., Vinterhalter B. Potato in vitro culture techniques and biotechnology. J. Plant Res., 2016, vol. 129, no. 4, pp. 759-770.
Nistor A., Campeanu G., Atanasiu N., Chiru N., Karacsonyi1 D. Influence of potato genotypes on “in vitro” production of microtubers. Rom. Biotechnol. Lett., 2010, vol. 15, no. 3, pp. 5317-5324.