Примечание: * - разница по сравнению с контролем статистически достоверна при Р < 0,05
Можно заключить, что обработка семян злаковых культур суспензией штамма Pseudomonas sp. GEOT18 оказывает влияние на начальные стадии их роста и развития. У растений опытного варианта происходит увеличение площади листьев и содержания в них хлорофилла, что может повышать фотосинтетическую продуктивность. Связь ростовых процессов с фотосинтетическими показателями в настоящее время не подвергается сомнению [2]; [3].
Вывод
Таким образом, полученные в исследованиях с кресс-салатом данные свидетельствуют о положительном влиянии штамма Pseudomonas sp. GEOT18, изолированного из подземных органов D. incarnata, на всхожесть семян сорта Весенний, рост побегов и корней, достоверно подтвержденное для сорта Дукат, а также об антифунгицидном действии на посевы. Обработка семян злаковых культур суспензией исследуемого бактериального штамма способствовала формированию у растений большей площади листовой поверхности и возрастанию среднесуточных приростов сырой массы. Эта картина наиболее выражено проявлялась у ячменя. Увеличение содержания хлорофилла в листьях ячменя опытного варианта могло способствовать повышению продуктивности фотосинтеза, что активизировало у этой культуры ростовые процессы.
Список литературы
1. Асатурова А. М. Физиологические признаки перспективных штаммов бактерий родов Bacillus и Pseudomonas - продуцентов микробиопрепаратов / А. М. Асатурова // Масличные культуры. 2009. № 2 (141). С. 60-66.
2. Дерендовская А. Хлорофильные показатели и их связь с продуктивностью растений озимого ячменя / А. Дерендовская С. Жосан // Єtiinюa Agricolг. 2008. № 1(0). С. 3-7.
3. Мокроносов А. Т. Фотосинтез. Физиолого-экологические и биохимические аспекты / А. Т. Мокроносов, В. Ф. Гавриленко, Т. В. Жигалова. М.: Академия, 2006. 448 с.
4. Попова А. А. Антагонистическая активность некоторых штаммов рода Pseudomonas в отношении фитопатогенных грибов / А. А. Попова, Ю. В. Зайцева, А. В. Сидоров, О. А. Маракаев // Экспериментальная биология растений: фундаментальные и прикладные аспекты: годичное собрание ОФР, научная конференция и школа для молодых ученых: сборник материалов докладов. 2017. С.
5. Сидоренко О. Д. Перспективы использования биологических препаратов на основе микроорганизмов / О. Д. Сидоренко // Известия ТСХА. 2012. Вып. 6. С. 70-79.
6. Сидоров А. В., Биотехнологический потенциал эндофитных бактерийDactylorhiza incarnata L. Soo (Orchidaceae) / А. В. Сидоров, Ю. В. Зайцева, О. А. Маракаев // Интеграция науки и высшего образования, как основа инновационного развития аграрного производства. Материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием (18-20 июня 2019 года, Ярославль). Ярославль, 2019. С. 131.
7. Avdeenko A. Bacillus subtilis based products as an alternative to agrochemicals / A. Avdeenko, S. Avdeenko, Domatskiy, A. Platonov // Research on Crops. 2020. № 21(1). P. 156-159. http://dx.doi.org/10.31830/2348-7542.2020.026
8. Chebotar' V. K. Microbial preparations on the basis of endophytic and rhizobacteria to increase the productivity in vegetable crops and spring barley (Hordeum vulgare), and the mineral fertilizer use efficiency / V. K. Chebotar', A. N. Zaplatkin, A. V. Shcherbakov, N. V. Mal'fanova, A. A. Startseva, Ya. V. Kostin // Agricultural Biology. 2016. V. 51. № 3. P. 335-342. http://dx.doi.org/10.15389/agrobiology.2016.3.335eng
9. Dymova O. Chlorophylls and their role in photosynthesis / O. Dymova, L. Fiedor // Photosynthetic pigments: chemical structure, biological function and ecology. 2014. P. 140-160.
10. Glickmann E. Auxin production is a common feature of most pathovars of Pseudomonas syringae / E. Glickmann, Gardan, S. Jacquet, S. Hussain, M. Elasri, A. Petit, Y. Dessaux // Molecular plant-microbe interactions. 1998. V. 11. № 2. P. 156-162. https://doi.org/10.1094/MPMI.1998.11.2.156
11. Golovko, T. Pigments and productivity of the crop plants / T. Golovko, G. Tabalenkova // Photosynthetic pigments: chemical structure, biological function and ecology. Syktyvkar, 2014. P. 207-220.
12. Lavicoli A. Induced systemic resistance in Arabidopsis thaliana in response to root inoculation with Pseudomonas fluorescens CHA0 / Lavicoli, E. Boutet, A. Buchala, J. P. Mйtraux // Molecular Plant-Microbe Interactions. 2003. Vol. 16, № 10. P. 851-859. https://doi.org/10.1094/MPMI.2003.16.10.851
13. Minaeva O. M. Effectiveness of applying bacteria Pseudomonas sp., strain b-6798, for anti-phytopathogenic protection of crops in Western Siberia / O. M. Minaeva, E. E. Akimova // Tomsk State University Journal of Biology. 2013. № 3 (23). С. 19-37.
14. Ortiz-Castro R. Pseudomonas putida and Pseudomonas fluorescens influence Arabidopsis root system architecture through an auxin response mediated by bioactive cyclodipeptides / R. Ortiz-Castro, J. Campos-Garcнa, J. Lуpez-Bucio, // Journal of Plant Growth Regulation. 2020. № - P. 254-265. https://doi.org/10.1007/s00344-019-09979-w
15. Oteino N. Plant growth promotion induced by phosphate solubilizing endophytic Pseudomonas isolates / N. Oteino, D. Lally, S. Kiwanuka, A. Lloyd, D. Ryan, K. J. Germaine, D. N. Dowling // Front. Microbiol. 2015. № 6. P. 745. https://doi.org/10.3389/fmicb.2015.00745
16. Ricci E. Growth promotion of greenhouse tomatoes with Pseudomonas sp. and Bacillus sp. biofilms and planktonic cells / E. Ricci, T. Schwinghamer, D. Fan, D. L. Smith, V. Gravel // Applied Soil Ecology. 2019. № 138. P. 61-68. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2019.02.009
17. Trinh C. S. Evaluation of the plant growth-promoting activity of Pseudomonas nitroreducens in Arabidopsis thaliana and Lactuca sativa / C. S. Trinh, H. Lee, W. J. Lee, S. J. Lee, N. Chung, J. Han, J. Kim, S.-W. Hong, H. Lee // Plant Cell Reports. 2018. № - P. 873-885. https://doi.org/10.1007/s00299-018-2275-8
18. Wintermans J. Spectrophotometric characteristics of chlorophylls a and b and their phenophytins in ethanol / Wintermans, A. S. De Mots // Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Biophysics including Photosynthesis. 1965. V. 109. № 2. P. 448-453. https://doi.org/10.1016/0926-6585(65)90170-6