Дипломная (вкр): Cравнение санитарно-микробиологических показателей в реанимационных отделениях ККБ№1

Среда Симмонса − питательная среда, применяемая для определения способности бактерий использовать в качестве единственного источника углерода цитраты. Готовили добавлением к среде Козера 0,02% магния сульфата, 0,3% нейтрального цитрата натрия, 2% агара. После растворения агара устанавливали рН 7,2 и прибавляют 10 мл на 1 л 15% спиртового р-ра бромтимолового синего. Среду фильтровали, разливают по пробиркам, стерилизовали 15 мин при 120°С, скашивали.

Среда КингА (идентификация псевдомонад). Растворили 45 г среды в 1 литре дистиллированной воды. Добавили 10 мл глицерина. Хорошо перемешали и растворили нагреванием при частом перемешивании. Кипятили в течение 1 минуты до полного растворения. Разливали в соответствующие емкости и стерилизовали в автоклаве при 121°С в течение 15 минут.

Желточно-солевой агар − элективная среда для стафилококков. Для изготовления ЖСА к стерильному, расплавленному и охлажденному до 48°С МПА (рН 7,2−7,4) с 7,5−10% натрия хлорида добавляли 15−20% по объему стерильной желточной эмульсии . Среду быстро перемешивали и разливали в чашки Петри.

Среда Сабуро - применяется для культивирования дрожжей и плесени. В воду добавляли пептон и кипятили 10 минут. Фильтровали через полотно. К полученному объему после фильтрации прибавляли глюкозу или мальтозу. Если рН выше, чем 5,7, то подкисляли 5% раствором HCl до рН 5,7. Разливали в стерильные пробирки по 10 мл. Стерилизовали при 110°С (0,5 кгс/кв. см − 30 минут).

.3 Выделение микроорганизмов из воздуха

Бактериологическое исследование воздушной среды предусматривает: определение общего содержания микробов в 1 м³ воздуха; определение содержания золотистого стафилококка в 1 м³ воздуха.

Отбор проб воздуха для бактериального исследования проводили в следующих помещениях: операционных блоках, перевязочных, послеоперационных палатах, отделениях и палатах реанимации и интенсивной терапии и др. помещениях, требующих асептических условий.

Пробы воздуха отбирали аспирационным методом с помощью пробоотборника ПУ-1Б (ЗАО «Химко», г. Москва).

Скорость протягивания воздуха составляет 25 л в минуту. Количество пропущенного воздуха должно составлять 100 литров для определения общего содержания бактерий и 250 литров для определения наличия S. aureus и плесени. Исследование воздуха седиментационным методом допускается в исключительных случаях. Так ОМЧ в помещениях класса А (особо чистые) - 200 КОЕ/ м³, класса Б (чистые) - 500-750 КОЕ/м³, класса В (условно чистые) - 750-1000 КОЕ/м³. Плесени и S. аureus в 250 литрах воздуха чистых помещений быть не должно. В помещениях класса Г (грязные) данные показатели не нормируются [СанПиН 2.1.3.1375-03…, 2003].

Для определения общего содержания бактерий в 1м³ воздуха забор проб проводили на 2% питательный агар. Посевы инкубировали при температуре 37°С в течение 24 часов, затем оставляли на 24 часа при комнатной температуре, подсчитывали количество колоний, выросших и производили перерасчет на 1 м³ воздуха.

Для определения наличия стафилококков забор проб проводили на ЖСА. Вырастили колонии и идентифицировали их.

.4 Выделение микроорганизмов из объектов внешней среды

Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов внешней среды предусматривает выявление стафилококка, синегнойной палочки, бактерий группы кишечных палочек. Забор проб с поверхностей различных объектов осуществляют методом смывов.

Взятие смывов производили стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки, или марлевыми салфетками, размером 5×5 см, простерилизованными в бумажных пакетах или в чашках Петри. При контроле мелких предметов смывы забирают с поверхности всего предмета. При контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят в нескольких местах исследуемого предмета площадью примерно в 100−200 см² .

Для выделения стафилококков делали посев непосредственно на чашку Петри с ЖСА. Кроме того, в качестве среды накопления использовали бульон с 6,5% NaCl, бульон с 1% глюкозы, разлитые в пробирки по 0,5 мл, в которые засевали по 0,2−0,3 мл смывной жидкости. Засеянные пробирки инкубировали при 37°С в течение 20−24 часов, после чего делают высев на ЖСА.

Для выявления бактерий группы кишечных палочек производят посев на среду обогащения, для чего тампон (марлевую салфетку) погружают в 10−20% желчный бульон или среду Кесслера. Через сутки инкубирования при 37°С делают пересев на среду Эндо. Подозрительные колонии на среде Эндо микроскопируют и пересеивают на 2-ую бродильную пробу − среду Гисса с глюкозой. Среду выдерживают 24 часа при 43°С.

.5 Бактериологический контроль качества стерилизации

Стерильность в отделениях исследовали методом смывов. Контролю подвергали хирургический инструментарий, шприцы, иглы, системы переливания крови многократного использования, зонды, катетеры, бужи, резиновые перчатки и другие изделия из резины и пластикатов, хирургический шовный материал, перевязочный материал, руки хирургов и кожа операционного поля, хирургическое белье.

Для контроля стерильности используют следующие питательные среды: сахарный бульон Хоттингера (0,5 и 1% глюкозы), тиогликолевую среду, бульон Сабуро. Посевы в бульон Хоттингера и тиогликолевую среду выдерживали в термостате при температуре 37°С, среду Сабуро − при температуре 20−22°С. Посевы инкубировали в термостате в течение 14 суток.

.6 Идентификация возбудителей

Идентификацию микроорганизмов в основном проводили с помощью системы IVD MALDI Biotyper 2.1 фирмы Bruker Daltonik (Германия).

.6.1 Идентификация бактерий рода Staphylococcus

Для идентификации использовали тест на каталазу, культуральный (рост ЖСА), бактериоскопический (кокки в скоплениях) и биохимический методы (ферментация маннита), из которых последний является главным.

Средами для культивирования были среды с повышенной концентрацией NaCl при температурном оптимуме 35−37°С, 5% кровяной агар, МЖСА и жидкие питательные среды, простой или сахарный бульон, можно с добавлением тиогликолята.

.6.2 Идентификация бактерий семейства Enterobacteriaceae

Для выращивания и первичной идентификации энтеробактерий использовали бактоагар Плоскирева, висмут-сульфитный агар, агар Эндо, среду Левина и другие.

Колонии представителей рода Salmonella имели черный цвет, представители родов Klebsiella и Enterobacter образовывали сочные слизистые розовые колонии диаметром 2-3 мм, а кишечная палочка − цветные колонии.

На первом этапе колонии засевали на агар Клиглера или Олькеницкого, среду с мочевиной, цитратный агар Симмонса, полужидкий (0,2−0,3%), под пробку этой пробирки помещали бумажку на индол, пропитанную раствором парадиметиламинобензальдемида.

На втором этапе уточняли родовую принадлежность выделенных культур: делали посевы на агар с фенилаланином, среды с аминокислотами, среду Кларка и среды Гисса с адонитом, инозитом, сорбитом, рамнозой.

Вид выделенных культур определяли при помощи наборов тестов, четко идентифицирующих внутривидовые различия энтеробактерий.

.6.3 Идентификация бактерий рода Pseudomonas

Для идентификации псевдомонад использовали (МПА, МПБ), среды Эндо, КингА и Хью-Лейфсона с глюкозой, ацетамидный агар.

На среде Эндо культуры синегнойной палочки образовывали бледно-розовые колонии небольших размеров.

Среда КингА используется для усиления способности синегнойной палочки продуцировать сине-зеленый пигмент пиоцианин.

Среду Хью-Лейфсона с глюкозой применяли для определения способности псевдомонад окислять глюкозу.

Эти две среды с засеянными культурами инкубировали в термостате в течение 18−24 часов при температуре 37°С.

Ацетамидный агар является дифференциальной средой для синегнойной палочки, поскольку она обладает способностью использовать ацетамид в качестве единственного источника азота и углерода.

.6.4 Идентификация бактерий рода Acinetobacter

При обнаружении бактерий рода Acinetobacter исследуемый материал засевали на 5% кровяной и 10% сывороточный агар, рН 7,2−7,4. Все посевы выращивали при 37°С в атмосфере, содержащей 10% СО₂ (в эксикаторе с зажженной свечой). Можно использовать среду Эндо. На кровяном агаре образовывались однотипные гладкие блестящие непрозрачные слегка выпуклые беспигментные (либо кремово или серовато-белого цвета) колонии, напоминающие колонии энтеробактерий; их диаметр варьирует в зависимости от вида. Консистенция колоний маслянистая или слизистая.

3. Сравнение санитарно-микробиологических показателей в реанимационных отделениях ККБ №1 имени С.В. Очаповского

В данной работе представлены как сравнительные данные за июль-август 2014 года так и архивные за весь 2014 год.

В ходе санитарно-микробиологических исследований внешней среды в различных отделениях и операционных Краевой клинической больницы №1 нами были изучены смывы с поверхности предметов и оборудования, с рук и одежды медперсонала, со стерильного хирургического материала и инструментария, а также пробы воздуха.

Контроль санитарно-гигиенического режима объектов внешней среды и воздуха нами проводился один раз в месяц, а контроль стерильности - один раз в неделю.

Забор проб на стерильность осуществляла операционная сестра под руководством сотрудника бактериологической лаборатории, в стерильные емкости с соблюдением строжайших правил асептики непосредственно перед проведением операции. При контроле мелких предметов смывы отбирали с поверхности всего предмета; при контроле предметов с большой поверхностью − с площади не менее 100 см², тщательно протирая поверхность [Приказ №720, 1978].

В июле - августе 2014 г. для изучения стерильности методом смывов исследовали руки и одежду персонала, шовный и перевязочный материал, хирургический инструментарий, зонды, катетеры, резиновые перчатки, другие изделия из резины и пластика, хирургическое белье, кожу операционного поля.

Так в июле исследована 461 проба, а в августе - 436. Все пробы оказались стерильными. А вот за весь 2014 год количество проб исследованных на стерильность составило 5931, причем только 5 из них не были стерильными.

За период двух летних месяцев в различных отделениях больницы было проверено всего 2.796 смывов с объектов внешней среды и 313 проб воздуха. Все показания внесены в таблицу 1.

Таблица 1 - Изучение санитарных показателей воздуха и смывов в отделениях и операционных ККБ №1 в июле - августе 2014 г.

В результате изучения санитарного состояния отделений и операционных ККБ №1 в основном исследовались смывы. Количество произведенных за два месяца смывов превысило число проб воздуха в 9 раз. А вот положительные по обоим показателям оказались почти одинаковыми: из 313 отобранных проб воздуха - 39 положительных, а из 2796 смывов - 44. Частота выявления нестандартных проб воздуха была в 8 раз больше.

За год было проверено 19032 смыва с объектов внешней среды и 2069 проб воздуха (таблица 2).

Таблица 2 - Изучение санитарных показателей воздуха и смывов в отделениях и операционных Краевой клинической больницы №1 в январе - декабре 2014 г.

Годовой показатель количества смывов также превысил число проб воздуха в 9 раз, положительные из них по обоим показателям были незначительными. Частота выявления нестандартных проб воздуха тоже была в 8 раз больше, чем при контроле смывов. Сравнивая показания двух таблиц (1 и 2), можно сказать, что частота обнаружения положительных проб воздуха за июль-август (12,5%) в 2 раза больше, чем за год (6,7%). Частота положительных проб смывов за летние месяцы (1,6%) также больше в 2 раза, чем за год (0,8%). Данные показатели констатируют тот факт, что наибольшая контаминация микроорганизмами в отделениях и реанимационных ККБ №1 характерна для теплых месяцев года.

Что касается исследований воздушной среды, то все заборы проб воздуха осуществлялись аспирационным методом с помощью пробоотборника ПУ-1Б (ЗАО «Химко», г. Москва).

Пробы считали нестандартными, если общее микробное число (ОМЧ) было более 1000 КОЕ/м³ или обнаруживались плесень и золотистый стафилококк [СанПиН 2.1.3.1375-03…, 2003].

Отбор проб воздуха для бактериального исследования нами был проведен в следующих помещениях: отделениях и палатах реанимации и интенсивной терапии, операционных блоках, хирургических отделениях и некоторых других помещениях, требующих асептических условий.

Число отделений, в которых исследовался воздух, в июле было 59, в августе это число осталось таким же. Результаты, полученные нами при изучении проб воздушной среды в июле и августе, отражены в таблице 3.

Таблица 3 - Исследования проб воздуха в отделениях и операционных ККБ №1 за июль - август 2014 г.

Из таблицы 3 видно, что в июле было исследовано на 9 проб воздуха больше. Тогда как количество нестандартных из них в августе было больше (частота нестандартных проб воздуха в августе составила 13,8%, а в июле - 11,2%).

Теперь необходимо изучить те же показания только за период всего 2014 года, для того чтобы понять, как частота нестандартных проб по воздуху зависит от времени года (рисунок 1).

Рисунок 1 - Частота обнаружения нестандартных проб воздуха в отделениях и операционных ККБ №1 за январь-декабрь 2014г.

Из рисунка 1 видно, что наибольший пик частоты нестандартных проб приходился на август - 14%, сентябрь - 12,7%, май - 12,6%, июль - 11,2%, а наименьший на февраль - 1%, март - 2,6%, апрель - 3,3%. Из этого следует контаминация микроорганизмами воздуха в теплое время года выше, чем в холодное.

Все результаты санитарно-бактериологических исследований проб воздуха в отделениях и операционных ККБ №1, полученные за два месяца представлены на рисунке 2.

Из рисунка 2 видно, что в августе было выявлено больше нестандартных проб воздуха (21) чем в июле (18) за два месяца (см. табл. 3). Частота обнаружения нестандартных проб воздуха, содержащих плесневые грибы, составила 62%, с превышением ОМЧ - 28%, содержанием S. aureus - 10%. Самым высоким показателем было число образцов с наличием плесени (в каждом из двух летних месяцев ее было выявлено по 12 проб). Количество проб, не соответствующих санитарным показателям по общему микробному числу (ОМЧ), за август - 6, а за июль - 5. Также в августе было выделено больше проб с золотистым стафилококком (3 пробы), чем в июле (1 проба).

Рисунок 2 - Соотношение нестандартных проб воздуха, взятых в отделениях и операционных ККБ №1 за июль-август 2014 г.

В отделении челюстно-лицевой хирургии г. Витебска, по данным С.А. Кабановой с соавторами [2005], микробное число при исследовании воздуха в гнойной палате составляло 550/400 (соответственно до и после работы), чистой перевязочной микробное число − 183/266. В палатах был выделен S. aureus, а в перевязочных патогенные штаммы стафилококков не выявлены.

По данным О.Л. Четиной, С.Ю. Баландиной [2013], количество микромицетов в воздухе помещений палат стационара инфекционного профиля в городе Пермь варьировало от 115,6 до 8 816,8 КОЕ/м³, в помещениях другого функционального назначения − от 30,5 до 138,3 КОЕ/м³.

Результаты санитарно-бактериологических исследований проб воздуха в отделениях и операционных Краевой клинической больницы №1 за январь-декабрь 2014 года представлены на рисунке 3.

Из рисунка 3 видно, что общее число нестандартных проб воздуха за год составило 139 штук. Наибольшее число этих проб было выявлено в мае (23 пробы), августе (21 проба) и сентябре (19 проб). А наименьшее - в феврале и декабре (по 2 пробы). Отсюда мы можем сделать вывод о том, что наибольшая загрязненность воздушной среды больничных помещений характерна для теплых месяцев года.

Из числа всех нестандартных проб воздуха, обнаруженных за год, преобладали пробы с плесневыми грибами (83 пробы). Количество проб, не соответствующих санитарным показателям по ОМЧ - 36 пробы, а золотистого стафилококка (Staphylococcus aureus) - 20 проб.

Рисунок 3 - Сравнение результатов санитарно-бактериологических исследований проб воздуха в отделениях и операционных ККБ №1 за январь-декабрь 2014 г.

Теперь сравним показатели санитарно-бактериологических исследований проб воздуха за июль-август и январь-декабрь 2014 года.

Рисунок 4 - Сравнение процентного соотношения показателей санитарно-бактериологических исследований проб воздуха в отделениях и операционных ККБ №1 за июль-август (1) и январь-декабрь 2014 года (2).

Этот рисунок иллюстрирует процентное соотношение показателей санитарно-бактериологических исследований проб воздуха по плесени, ОМЧ и S.aureus в отделениях и операционных Краснодарской краевой клинической больницы №1 за июль-август и январь-декабрь 2014 года. Так за два летних месяца процентные показатели плесени, ОМЧ и золотистого стафилококка были почти такими же как и за год: 62%, 28%, 10% и соответственно 60%, 26%, 14%.

Бактериологический контроль микробной обсемененности предметов внешней среды в отделениях ККБ №1 осуществлялся в основном методом смывов.

Число отделений, в которых исследовались смывы, в июле составило 71, а в августе этот показатель был несколько меньше - 61 отделение. Результаты, полученные нами при изучении смывов, отражены в таблице 4.

Таблица 4 - Исследования смывов в отделениях и операционных ККБ №1 за июль - август 2014 г.

Из таблицы 4 видно, что в июле было исследовано на 16 смывов больше. А вот нестандартных проб по смывам было на 4 больше в августе. Частота нестандартных проб по смывам также преобладала в августе и составляла 1,73%.

Сравним теперь эти показатели с данными за весь 2014 год (рисунок 4).

Сравнивая данные таблицы 4 с годовыми показателями (рисунок 4) следует отметить, что наибольшая частота положительных смывов отмечалась в теплые месяцы (сентябрь - 1,9%. август - 1,7% июль - 1,4%), а наименьшая − в холодные (в феврале и марте по 0,2%, в июне - 0,3%). Также нами был изучен и исследован спектр основных микроорганизмов, высеваемых из объектов внешней среды и воздуха в ККБ №1. Все результаты отражены в таблице 5.

Рисунок 4 - Частота обнаружения нестандартных смывов в отделениях и операционных ККБ №1 за январь-декабрь 2014 г.

Таблица 5 - Спектр микрофлоры, обнаруженной в смывах и воздухе отделений и операционных ККБ №1 за июль-август 2014 г.

Из таблицы 5 видно, что в августе обнаружено на 6 штаммов микроорганизмов больше по сравнению с июлем. Выявлено, что почти все микроорганизмы относятся к грамотрицательным (из 48 штаммов - 39). Наибольшую долю от всех микроорганизмов составил A. baumannii (в июле - 42,9%, в августе - 40,7%). На втором месте по высеваемости за июль был P. monteilii - 19%, а вот за август - S. aureus (22,5%). E. coli и Serratia marcescens за два месяца при санитарно-микробиологических исследованиях не были обнаружены. По данным Ф.К. Непсо [2014], исследования проведенные в ККБ №1 в июле-августе 2011-2012 годов показали, что на долю грамположительных микроорганизмов приходилось 34,3%; 55,3% − грамотрицательных бактерий и грибов рода Candida − 12,4%. Наиболее часто из грамотрицательных бактерий выделялись P. aeruginosa (25,5%), A. baumannii (20,9%). На втором месте по высеваемости - K. pneumoniae (14,5%) и E. coli (6,3%). Из грамположительных микроорганизмов основная роль принадлежала S. aureus (16,4%). Это еще раз доказывает, что ведущее место в этиологии ГСО принадлежит грамотрицательным бактериям.

Теперь рассмотрим эти же показатели только за год (таблица 6).

Таблица 6 - Спектр микрофлоры, обнаруженной в смывах и воздухе отделений и операционных ККБ №1 за январь-декабрь 2014 г.

Из таблицы видно - всего было высеяно 185 штаммов. Также как и летом превалировали грамотрицательные микроорганизмы (из 185 штаммов - 134). Наибольшую долю от всех микроорганизмов составил A. baumannii - 28%. На втором месте по высеваемости был - S. aureus (26,5%), а на третьем - P.aeruginosa (11%). Из числа прочих микроорганизмов высевалось много редко встречающихся или малоизвестных. Их число обычно составляло 1-2 штамма.

Санитарно-микробиологические исследования за изучаемый период показали, что больше всего микроорганизмов высеивалось в реанимационных отделениях. Этот факт и свидетельствует об их санитарном неблагополучии. В таблице 7 представлены сравнительные данные о санитарно-бактериологическом состоянии реанимационных отделений APO-3, APO-4, APO-5, APO-6, APO-7 и APO-8.

Таблица 7 - Данные санитарно-бактериологического контроля воздуха и смывов по реанимационным отделениям ККБ №1 за июль 2014 г.

Больше всего смывов было взято в АРО-7 (отделение диализа и нефрологии) - 80 и все соответствовали нормам, а проб воздуха в АРО-6 (отделение общей реанимации) - 11. В воздухе АРО-6 был обнаружен 1 штамм S. aureus, а из 55 смывов 15 оказались положительными (27,3%). В АРО-4 (ожоговое отделение) нестандартные смывы с объектов окружающей среды составили 5,7%, в АРО-8 (отделение общей реанимации) - 4%.

Рассмотрим теперь эти же данные только за август 2014 года (таблица 8).

Таблица 8 - Данные санитарно-бактериологического контроля воздуха и смывов по реанимационным отделениям ККБ №1 за август 2014 г.

Из таблицы 8 видно, что больше всего смывов взято в АРО-6 (отделение общей реанимации) - 90, 11 из них были нестандартными. Пробы воздуха в основном отбирали в этом же отделении (11 проб), нестандартных обнаружено не было. Больше всего штаммов микроорганизмов обнаружено в АРО-6 (отделение общей реанимации) - 12,2% и АРО-5 (отделение гнойной хирургии) - 15%. Золотистый стафилококк в воздушной среде этих отделений найден не был.

Сравнивая данные таблиц 7 и 8 с архивными данными за весь 2014 год, можно сказать в каких отделениях реанимации высевали больше микроорганизмов, которые действительно могут угрожать здоровью пациентов пребывающих здесь.

Таблица 9 - Данные санитарно-бактериологической проверки воздуха и смывов по реанимационным отделениям ККБ №1 за январь-декабрь 2014 г.

Из таблицы 9 видно, что за год больше всего смывов взято в АРО-6 (отделение общей реанимации) - 840, 40 из них являются нестандартными. Пробы воздуха в основном отбирали в этом же отделении (132 пробы), 5 из которых не соответствовали нормам. Больше всего штаммов микроорганизмов обнаружено в АРО-6 (отделение общей реанимации) - 45 штаммов и АРО-5 (отделение гнойной хирургии) - 37 штаммов. Золотистый стафилококк в воздушной среде был найден только в АРО-6 (5 штаммов). Меньше всего штаммов микроорганизмов обнаружено в АРО-7 (отделение нефрологии и диализа) - 5 штаммов и АРО-4 (ожоговое отделение).

Подытожив результаты 7, 8 и 9 таблиц, можно с уверенностью сказать, что наиболее не состоявшиеся в плане санитарно-микробиологического благополучия как за два месяца, так и за весь год были отделения гнойной хирургии (АРО-5) и общей реанимации (АРО-6), в которую поступают больные из травматологии, после ДТП, терапевтических и хирургических отделений.

Теперь рассмотрим спектр основных микроорганизмов, высеваемых с объектов внешней среды и воздуха в этих реанимационных отделениях в июле-августе 2014 года.

Таблица 10 - Спектр микрофлоры, обнаруженной в смывах и воздухе АРО-5 и АРО-6 за июль-август 2014 г.

В данной таблице представлен весь спектр микроорганизмов, которые хотя бы раз за два месяца встречались в одном из отделений. В основном все штаммы являлись грамотрицательными (из 36 штаммов - 33). Видно, что штаммы A.baumannii составляли наибольший процент встречаемости. Высеваемость штаммов A.baumannii составляла 56% в АРО-6 за июль, 45% в АРО-6 за август и 44% в АРО-5 за август. В целом за два месяца его было выявлено 18 штаммов. Высеваемости микрофлоры в АРО-5 за период июля не было.

Теперь сравним с архивными данными за год (таблица 11).

Таблица 11 - Спектр микрофлоры, обнаруженной в смывах и воздухе АРО-5 и АРО-6 в январе-декабре 2014 г.

Из данной таблицы видно, что на долю грамотрицательных микроорганизмов также приходится большая доля - 72 штамма из 82. На первом месте по высеваемости как и за 2 летних месяцев был A.baumannii - 35% в АРО-5 и 44% в АРО-6 (всего 33 штамма) А вот на втором месте S.aureus и P.aeruginosa - по 10 штаммов. Такие штаммы как P.mirabilis, A. lwoffi, E. vulneris, P. agglomerans, P. oryzihabitans, P. monteilii и A. schindleri встречались очень редко по 1-2 штамма.

Внутрибольничные инфекции - это инфекционные заболевания, полученные больными в лечебных учреждениях. Современные внутрибольничные инфекции вызываются различными микроорганизмами. Наиболее частыми возбудителями внутрибольничных инфекций являются резистентные к антибиотикам штаммы золотистого стафилококка, синегнойной палочки, протея, кишечной палочки, клебсиелл, серраций, грибов рода Candida, а также различные ассоциации указанных микробов. В зависимости от локализации возбудителя выделение его из организма больного или носителя происходит через различные органы и ткани (дыхательные пути, желудочно-кишечный тракт, мочеполовой тракт и др.) [Приказ №720, 1978].

Чтобы ответить на вопрос было ли инфекционное заболевание у больного приобретено в стационаре, мы подвергаем детальному изучению различные биоматериалы, взятые от него. Так нами был изучен количественный состав проб биоматериалов, взятых от больных в АРО-5 и АРО-6 за июль - август 2014 года и установлено сколько проб положительных.

Таблица 12 - Частота выявления проб биоматериалов с патогенными микроорганизмами от больных в АРО-5 и АРО-6 за июль - август 2014 года.

Как показывает таблица 12, количество исследованных в АРО-6 за два месяца проб биоматериалов почти в 1,5 раза больше, чем в АРО-5. Тогда как число образцов с возбудителями было почти одинаковое.

Чтобы понять могут ли представители микрофлоры, обозначенные в таблице 7, быть возбудителями внутрибольничных инфекций у пациентов, находящихся на стационарном лечении в АРО-5 и АРО-6 необходимо изучить спектр высеваемости микроорганизмов от этих больных (таблица 13) и сопоставить его с микрофлорой внешней среды (см. таблицы 10, 11).

Таблица 13 - Спектр основных микроорганизмов, выделяемых от больных в АРО-5 и АРО-6 за июль-август 2014 г.

Из данного перечня микроорганизмов за два месяца больше всего высевались A. baumannii (166 штаммов), K. pneumoniae (118 штамма), P. aeruginosa (144 штаммов). A. baumannii преобладал в АРО-6 (за июль и август) и в АРО-5 (за август). В смывах обнаружены те же возбудители. Правда K. pneumoniae из внешней среды была выделена только в АРО-5 в августе, а за год этот штамм не преобладал вообще. Золотистый стафилококк также в небольших количествах выделялся от больных, а из окружающей среды за год он был на втором месте по высеваемости. Остальные микроорганизмы выделявшиеся в смывах и воздухе исследуемых отделений у больных обнаружены не были. Но это еще не сведетельствует о том, что они, например, не появятся в другой раз.

А вот за год эти штаммы микрооганизмов тоже преобладали над другими. В АРО-5 было высеяно больше всего K. pneumoniae (492 штамма), A. baumannii (311 штаммов) и P. aeruginosa (246 штаммов), а вот в АРО-6 высеваемость A. baumannii составила 445 штаммов, P. aeruginosa - 290 штаммов и K. pneumoniae - 202 штамма. Так из работы Е.В. Ахановой [2006] видно, что при изучении больничного комплекса города Армавира за 2002-2005 г.г. от больных выделялись P. aeruginosa, P.maltophili и P. putida. В нашем случае высевалась только P. aeruginosa, хотя также могли P. monteilii, P. оryzihabitans или другие микроорганизмы. Но даже наличие у пациентов ранее упоминавшихся микроорганизмов говорит о том, что заражение могло произойти во время пребывания в стационаре.

Заключение

Изучив результаты архивных данных за год и результаты проведенных в июле - августе 2014 года исследований в отделениях и операционных ККБ №1, можно сделать следующие выводы:

. За два летних месяца изучена стерильность объектов в 107 отделениях и операционных ККБ №1. Все 867 проб оказались стерильными. В 2014 г. проб, исследованных на стерильность, было 5931. 5 (0,08%) из них оказались не стерильными.

.Частота нестандартных смывов в июле составила 1,4% (20 нестандартных проб из 1406), а в августе - 1,7% (24 положительных пробы из 1390). Контаминация смывов микроорганизмами в августе (27 штаммов) была выше по сравнению с июлем (21 штамм). За год из смывов было высеяно 185 штаммов микроорганизмов. Наибольшая частота обнаружения нестандартных смывов за 2014 год отмечалась в сентябре - 1,9%.

. За исследуемый период из смывов было выделено 48 штаммов 12 видов микроорганизмов. Из них 39 культур (81%) - грамотрицательные. Чаще всего выделяли бактерии A.baumannii (43% в июле и 41% в августе). За весь 2014 год из 185 штаммов 33 видов микроорганизмов, выделенных в ходе санитарных проверок, 134 культуры принадлежали к грамотрицательным (72%). Наибольшую долю от всех штаммов составил A.baumannii - 28%.

. В августе нестандартных проб воздуха выявлено больше (21 проба), чем в июле (18 проб). За весь 2014 год их составило 139 штук. Наибольшее число этих проб было обнаружено в мае - 23 пробы.

. За период двух летних месяцев преобладали пробы воздуха с плесневыми грибами-микромицетами − 62% (из 39 нестандартных проб − 24). Пробы воздуха с золотистым стафилококком составили 3 пробы в августе и 1 проба в июле соответственно. Самым высоким показателем за год было также наличие плесени - 60% (83 пробы из 139). S. аureus был обнаружен в 20 пробах воздуха.

. Неблагополучными в плане санитарного состояния были реанимационные отделения гнойной хирургии (АРО-5) и общей реанимации (АРО-6). За июль-август в АРО-5 выявлено 9 нестандартных проб смывов (9%), а в АРО-6 - 26 (17,9%). В АРО-6 одна проба воздуха содержала S.aureus (4,5%). За год в АРО-5 обнаружено 37 нестандартных проб смывов (6,37%), в АРО-6 − 40 (4,76%).В АРО-6 5 проб воздуха (3,8%) содержали S. aureus.

. За исследуемый период в этих реанимационных преобладали грамотрицательные микроорганизмы, обнаруженные в смывах и воздухе - 92% (из 36 штаммов - 33). Чаще всего высевались штаммы A.baumannii (18 штаммов). За 2014 год в АРО-5 и АРО-6 на долю грамотрицательных приходилось 72 штамма из 82 (87,8%). На первом месте по высеваемости также был A.baumannii (33 штамма).

. Среди микроорганизмов, выделенных от больных, находящихся на лечении в АРО-5 и АРО-6, больше всего высевались А.baumannii (166 штаммов), P. aeruginosa (144 штамма), K. pneumoniae (118 штаммов). В 2014 году в АРО-5 и АРО-6 тоже преобладали A.baumannii (756 штаммов), K. pneumoniae (694 штамма), P. aeruginosa (536 штаммов).

Библиографический список

1.Акимкин В.Г., Манькович Л.С., Лившец Д.М. Медицинская сестра - основное звено в профилактике внутрибольничных инфекций // Сестринское дело. 1998. № 5-6. С. 42-45 .

. Алешукина А.В. Медицинская микробиология. Ростов н/Д, 2003. 480с.

.Аханова Е.В. Этиологическая роль бактерий рода Pseudomonas в развитии госпитальных инфекций в больничном комплексе города Армавира: дипломная работа. Краснодар, 2006. 34 с.

.Баранцевич Е.П., Гоик В.Г., Баранцевич Н.Е. Мониторинг контаминации воздуха больничных помещений плесневыми грибами // Бюлл. Федерального центра сердца, крови и эпидемиологии им. В.А. Алмазова. 2010. №5. С. 4−8.

. Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология. М., 2005. 736 с.

.Внутрибольничные инфекции: региональные проблемы и пути решения/ А.Л. Колобов [и др.].

.Возбудители гнойно-септических внутрибольничных инфекций в реанимационных отделениях стационара скорой медицинской помощи / Т.В. Черненькая [и др.]. // Медицинский алфавит. 2013. Т.2. №12. С.30-33.

. Воробьев А.А., Кривошеин Ю.С., Широбоков В.П. Медицинская и санитарная микробиология. М., 2003. 464 с.

. Горбич Ю.А., Карпов И.А., Кречникова О.И. Инфекции, вызываемые Acinetobacter baumannii: факторы риска, диагностика, лечение, подходы к профилактике // Медицинские новости. 2011. №5. С. 31-39.

.Госпитальные инфекции, вызванные Pseudomonas aeruginosa. Распространение и клиническое значение антибиотикорезистентности / С.В. Сидоренко [и др.]. // NATURE.WEB.RU.

. 2-гептил-4-хинолон - предвестник хинолоновой сигнальной молекулы Pseudomonas aeruginosa модулирует плавающую подвижность Pseudomonas aeruginosa / Джеймс Т. Ходкиннсон [и др.]. // Бактериология. 2011. №23. С. 6770-6780.

.Деминовская Е.В. Неферментирующие бактерии в аспекте множественной антибиотикорезистентности возбудителей внутрибольничных инфекций // Болезни и антибиотики. 2012. №1. С.89-95.

. Захарова Ю.А. Внутрибольничные инфекции: вопросы оптимизации микробиологического мониторинга // Справочник заведующего клинико-диагностической лабораторией. 2011. №2. С. 22-24.

.Зверев В.В., Бойченко М.Н. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология. М., 2010. 480 с.

. Инструкции по применению - готовая среда в чашках. 2013 // RESOURSE.RU.

. Инешина Е.Т., Гомбоева С.В. Методические указания к лабораторному практикуму по курсам «Санитарная микробиология», «Санитарно-микробиологический контроль на производстве», КПВ «Микробиология». Улан-Уде, 2006. 90 с.

.Кабанова С.А., Окулич В.К., Косинец А.Н. Особенности формирования резистентности микроорганизмов в отделении челюстно-лицевой хирургии // Вестник ВГМУ. 2005. Т.4. №1. С.109-114.

. Кавкало Д.И., Горшевникова Э.В. Источники и механизмы распространения некоторых возбудителей внутрибольничных инфекций в хирургическом стационаре // Клиническая хирургия. 1986. №5. С. 25−29.

.Каплан Б.М., Максименко Л.В., Федотова Н.Н. Профилактика внутрибольничной инфекции в стоматологических лечебно-профилактических учреждениях // Вестник МСИ. 2008. №1. С.56-59.

.Коротяев А.И., Бабичев С.А. Медицинская микробиология, иммунология, вирусология. СПб., 2002. 592 с.

.Краткий курс медицинской микробиологии / Г.М. Шуб [ и др.]. Саратов, 2001. 342 с.

.Куандыкова А.К. Инфекционный контроль в лечебно-профилактических учреждениях на современном этапе // Актуальные проблемы гуманитарных и естественных наук. 2010. №8. С.338−340.

. Маслов Д.И., Рева И.В., Гурбанов К.Р. Особенности стафилококковой контаминации в покровные ткани // Успехи современного естествознания. 2007. №12. С.54−56.

. Меньшиков В.В. Клиническая лабораторная аналитика. Частные аналитические технологии в клинической лаборатории. М., 2002. Т.4. 816 с.

. Методические указания по эпидемиологическому надзору за ВБИ. №8-6/ 34. От 02.09.1987. М., 1987. 38 с.

.Микробиологическая оценка гигиенических навыков студентов первого года обучения / К. Домовец [ и др.]. Киров, 2011. 29 с.

.Микробиологические исследования окружающей среды / М.В.Ларионов и др. Саратов, 2010. 109 с.

. Митрофанова Н.Н., Мельников В.Л., Слетов М.М. Анализ данных микробиологического мониторинга в многопрофильном стационаре. // Медицинский альманах. 2009. №2. С.90−92.

. Подсвирова И.А., Батурин В.А., Алиева Е.В. Микробиологический мониторинг за возбудителями нозокомиальных инфекций в отделениях реанимации и интенсивной терапии // Медицинский вестник Северного Кавказа. 2012. №3. С.77−79.

.Прозоркина Н.В., Рубашкина Л.А. Основы микробиологии, вирусологии, иммунологии. Ростов н/Д, 2008. 384 с.

. Приказ Министерства РФ №535 от 22 апреля 1985 г. «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений». М., 1985. 133 с.

.Приказ №720 от 31 июля 1978 г. «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мер по борьбе с ВБИ». М., 1978. 86 с.

. Приложение №3 к СанПиН 2.1.3.2630-10 от 18 мая 2010 г. №58 «Класс чистоты, рекомендуемый воздухообмен, допустимая и расчетная температура». М., 2010. 11 с.

. Распространение клебсиелл в акушерских стационарах и некоторые биологические свойства выделенных штаммов / А.С. Байрамова [ и др.]. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 1991. №8. С. 40−43.

. Результаты микробиологического мониторинга объектов внешней среды в отделениях реанимации и интенсивной терапии многопрофильного стационара / Л.В. Большакова [и др.]. // Инфекции и иммунитет. 2012. Т.2. №1−2. С.472−473.

. Роль внутрибольничных протеаз в устойчивости к антибиотикам, подвижности и образовании биопленок у Pseudomonas aeruginosa / Фернандез Луция [и др.]. // Антимикробиология. 2012. №2. С. 1128-1132.

. Рулева А.А. Осторожно: стафилококк! // Медицинское обслуживание и организация питания в ДОУ. 2013. №2. С.1−9.

.Состояние антибиотикорезистентности грамотрицательных возбудителей нозокомиальных инфекций в отделениях интенсивной терапии / А.Н. Семина [и др.]. 1997

.Стецюк О.А. Нозокомиальные инфекции в отделении интенсивной терапии. М., 2004. 328 с.

. Алешукина А.В. Медицинская микробиология. Ростов н/Д, 2003. 480с.

.Тарлыков И.И., Рубан Г.И. Здоровье нации. Эпидемическая безопасность больных при оказании медицинской помощи. // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2013. №6. С.3−7.

.Усманова Г.М. Санитарно-эпидемиологический надзор за внутрибольничными инфекциями медицинского персонала в родовспомогательных учреждениях Республики Таджикистан // Известия академии наук Республики Таджикистан. Отделение биологических и медицинских наук. 2011. №2 . С.80-82.

.Фельдблюм И.В., Захарова Ю.А. Сравнительная оценка эффективности различных форм микробиологического мониторинга больничной среды в системе эпидемиологического надзора за гнойно-септическими инфекциями // ЗНиСО. 2008. №5. С.15−18.

. Чернякова Е.В. Современные способы очистки и обеззараживания воздуха воздуха в медицинских организациях. // СанЭпидемКонтроль. 2014. №6. С. 76-80.

. Четина О.Л., Баландина С.Ю. Исследование помещений стационара инфекционного профиля на предмет контаминации условно-патогенными грибами // Современные проблемы науки и образования. 2013. №1. С.37−43.

. Этиологическая роль грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов в возникновении ВБИ / Ф.К. Непсо [и др.].

. Энтеробактерии в этиологической структуре кишечных инфекций / О.С. Тураров [и др.]. // Вестник КазМНУ. 2012. №2. С.35−36.

. Юзбашев В.Г., Криштафович И.А., Криштафович Ю.А. Дезинфекционные технологии и оборудование для обеззараживания воздуха в ЛПУ. // Поликлиника. 2006. №4. С. 82-85.

. Яковенко О.Н., Владимиров Н.И. Оценка значимости микробиологического загрязнения факторов передачи в ЛПУ и развития госпитальных инфекций. // Методологические проблемы изучения, оценки и регламентирования биологических факторов в гигиене окружающей среды. М., 2009. С.347-349.