Материал: Лечение инфекционных больных. Ю.В.Лобзин (2003 г.)-разблокирован

Окончание приложения 2

Рвотные массы и промывные воды желудка (50—100 мл) отбирают в стерильные баночки, добавляя в них стерильный 10% раствор соды до нейтральной реакции пробы (контроль pH осуществляют полоска­ми индикаторной бумаги).

Желчь (дуоденальное содержимое) берут с помощью стерильного дуоденального зонда, который вводят натощак в двенадцатиперстную кишку. При правильном введении выделяется желчь золотисто-жел­того цвета (порция А). Затем в зонд вводят 30 мл 30% стерильного раствора магния сульфата, подогретого до температуры 37^Q С, и через 15-20 мин извлекают пузырную желчь темного цвета (порция В). В последующем желчь будет выделяться из желчных протоков (по­рция С). Каждую порцию желчи собирают в отдельную пробирку. Нативный материал без промедления отправляют в лабораторию.

Кровь дня выделения сальмонелл берут шприцем из локтевой вены в первую неделю заболевания в количестве 10 мл (в более позд­ние сроки — 15-20 мл) и засевают у постели больного в соотношении Г. 10 в среду Раппопорта или желчный бульон. При отсутствии воз­можности посева кровь отбирают в стерильную пробирку, закрывают пробкой и направляют в лабораторию. Для серологических исследо­ваний кровь берут из локтевой вены дважды по 5—10 мл в первые дни болезни и через 7—10 сут.

В случае смерти больного с диарейным кишечным заболеванием органы трупа должны подвергаться бактериологическому исследова­нию в ближайшее время. Исследованию подлежат:

« содержимое тонкой и толстой кишки;

• отрезки тонкой и толстой кишки, желчный пузырь с желчью;

• кусочки печени и селезенки;

• кровь;

• мезентериальные лимфатические узлы, костный мозг.

Взятые пробы различных органов трупа укладывают отдельно в стерильные банки.

Пробы для бактериологического исследования отбирают в стери­льную посуду без следов дезинфицирующих растворов. Стерилиза­цию посуды проводят автоклавированием, сухим жаром или кипяче­нием в 1% растворе соды. Допускается дезинфекция суден и тарелок осветленным раствором хлорной извести (нельзя использовать лизол и карболовую кислоту) с последующим промыванием горячей водой до полного удаления дезинфектанта. Банки, пробирки с материалом должны закрываться непромокаемыми пробками и пергаментной бу­

магой, укладываться в специально подготовленную для транспорти­рования металлическую тару. Все материалы должны направляться в лабораторию с сопровождающим не позднее чем через 2 ч после их отбора (при использовании транспортных сред и сред обогащения — в течение 1—7 суток в зависимости от среды).

Правила забора материала для бактериологического исследования

Материалы для бактериологического исследования забирает от боль­ных медицинский персонал лечебного учреждения.

При исследовании на бактерионосительство сбор материала про­водит специально проинструктированный медицинский работник под руководством врача. Ответственность за организацию отбора проб и их доставку в лабораторию возлагается на начальника лечеб­ного учреждения.

Основным материалом для исследования являются испражнения. При заболеваниях, протекающих по типу острого гастроэнтерита, до­полнительно исследуют рвотные массы и промывные воды желудка. Кровь используют для выделения сальмонелл и серологических ис­следований. Желчь (дуоденальное содержимое) исследуют улиц, пе­реболевших сальмонеллезом или холерой, при диспансерном наблю­дении.

Испражнения отбирают после дефекации больного из судна, гор­шка, эмалированных или картонных тарелок (стерильных, без следов дезинфектанта) стерильным шпателем, ложкой или петлей из алюми­ниевой проволоки. Отбирают 2—3 г испражнений, обязательно вклю­чая патологические примеси (слизь, кровь, гной). Собранные порции испражнений помещают в стерильные баночки (пробирки) и сохра­няют на холоде, если срок доставки в лабораторию не превышает 2 ч. В противном случае используют транспортные среды — консерванты (глицериновая смесь, тиогликолевая среда) или среды обогащения (на сальмонеллы — селенитовый бульон, среда Мюллера, магниевая). Объем испражнений при этом должен составлять 1/3 объема консер­ванта (среды обогащения). У больных с тяжелой формой гастроэнте­рита (подозрение на холеру) испражнения обязательно направляют в лабораторию в нативном виде и в 1% щелочной пептонной воде.

Испражнения можно забирать путем введения в прямую кишку на 6-~ 10 см стерильной петли из алюминиевой проволоки или стери­льного ватного тампона. Конец тампона (петли) непосредственно пе­ред употреблением смачивают стерильным 0,9% раствором натрия хлорида или консерванта. Сразу же проводят посев на питательные среды или помещают тампон в пробирку (флакон) с консервантом или средой обогащения (на сальмонеллы — в селенитовую среду).

Для целенаправленного исследования на возбудителей кампило- бактериоза испражнения берут из судна стерильной деревянной па­лочкой немедленно после дефекации или из прямой кишки тампо­ном.

При условии незамедлительной доставки материала в лаборато­рию образцы фекалий, отобранные шпателем в количестве 0,8—1,0 г в стерильные стеклянные флаконы, транспортируются в нативном со­стоянии; допускается хранение нативных фекалий при 4° С не более 1 ч. При необходимости транспортировки материала в течение време­ни, превышающего 1 ч с момента его забора, следует применять про­бирочные транспортные среды: 0,9% раствор натрия хлорида (срок хранения фекалий при комнатной температуре 3—5 ч), 0,1% пептон­ную воду (3—48 ч), тиогликолевую среду для контроля стерильности КС (до 3 сут). В любую из этих транспортных сред, разлитую в про­бирки по 3—5 мл, исследуемый материал помещают в соотношении 1:3-1:5 (об:об). Охлаждение до 4* С позволяет значительно удлиннить сроки транспортировки образцов на транспортных средах: на 0,9% растворе натрия хлорида — до 24 ч, на 0,1% пептонной воде — до 72 ч, на среде КС — до 5—7 сут.

Ректальные мазки транспортируются только на транспортных средах: наилучшей является агаризованная среда КС, на которой кампилобактер сохраняет жизнеспособность от одних суток (без ох­лаждения) и до 3 сут (с охлаждением).

Вирусологические исследования при диарейных заболеваниях

Материалом для выделения возбудителей вирусных диарей служат фекалии больных, взятые в первые дни заболевания. Для сбора фека­лий используют стерильные флаконы с резиновой или пластмассовой пробкой. Для этой цели удобны флаконы из-под пенициллина. Фека­

лии собирают стерильной лопаточкой, заполняя 1/3—1/4 пеницилли­нового флакона, резиновую пробку закрепляют лейкопластырем. Пробы транспортируют в контейнерах, заполненных сухим льдом или другим хладагентом, при температуре не выше 0^е С. Время достав­ки не должно превышать 4—6 ч. При отсутствии хладагента материал можно транспортировать в 50% забуференном растворе глицерина (50% стерильного химически чистого глицерина, 50% стерильного изотонического раствора натрия хлорида, pH 7,4) в течение 1-2 сут.

В связи с тем, что ротавирусы, вирусы группы Norwalk, коронави­русы, калицивирусы и астровирусы плохо репродуцируются в культу­рах клеток, для их обнаружения используют электронную и иммуноэ- лектронную микроскопию. Выделение энтеровирусов и аденовирусов осуществляется на различных линиях первичных или перевиваемых культур клеток в зависимости от вида вируса. Диагностику ротавирус­ных диарей проводят по выявлению ротавирусных антигенов в фека­лиях, используя «тест-систему диагностическую иммуноферментную для обнаружения ротавирусных антигенов» отечественного производ­ства (предприятие «Аквапаст», Санкт-Петербург).

Для выявления иммунологических сдвигов, обусловленных виру­сами-возбудителями острых гастроэнтеритов, исследуют две пробы крови — раннюю, взятую в первые 2—3 дня болезни, и позднюю, взя­тую спустя 2—3 недели от начала заболевания. Можно исследовать и одну пробу сыворотки, однако диагностическая трактовка результа­тов при этом затруднена. Для серологической диагностики использу­ют реакции: нейтрализации, связывания комплемента, торможения гемагглютинации, иммунолюминесценции, радиоиммунологический и иммуноферментный методы. На этиологическую роль вируса ука­зывает четырехкратное и большее увеличение титра антител к нему.

Приложение 3

Показания к применению эфферентной терапии у инфекционных больных

Окончание приложения 3

Приложение 4